OverExpress C41(DE3) Chemically Competent Cell

大腸桿菌化學感受態細胞

產品標簽：

OverExpress C43(DE3)；C43(DE3) pLysS；BL21 (DE3)；OverExpress C41(DE3)；表達感受態細胞；毒性蛋白表達；pET表達載體；

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菌株描述

OverExpress C41(DE3)、C41(DE3) pLysS、C43(DE3)和C43(DE3) pLysS都是大腸桿菌（E. Coli）菌株，有效表達不同物種有機生物體包括細菌、酵母菌、植物、病毒和哺乳動物來源的毒性蛋白。

OverExpress C43(DE3)菌株來源于OverExpress C41(DE3)菌株，通過篩選OverExpress C41(DE3)對另一個不同毒性蛋白的抗性菌株而獲得。OverExpress C41(DE3)來源于BL21(DE3)，此菌株含一個突變，能降低T7 RNA聚合酶（T7 RNAP）的水平，從而預防許多重組毒性蛋白過表達引起的細胞死亡。OverExpress C43(DE3)菌與OverExpress C41(DE3)相比，至少攜帶另一個不同突變，使其獲得更廣泛更高的毒性蛋白表達能力。

OverExpress C43(DE3)菌株含DE3區，表明該菌株染色體上整合λ噬菌體DE3溶原體（其上攜帶lacUV5啟動子調控的T7 RNA聚合酶基因），適用于靶基因克隆進入T7啟動子表達載體比如pET系列的蛋白生產。

OverExpress C41(DE3)菌株基因型：F–ompT hsdSB (rB- mB-) gal dcm (DE3)

產品描述

本品是大腸桿菌OverExpress C41(DE3)菌株經特殊工藝制作所得的感受態細胞，可用于DNA的熱擊轉化。經pUC19質粒檢測轉化效率＞2×108 cfu/μg DNA。且在-80℃能穩定保存幾個月轉化效率不發生改變。

產品包裝

保存與運輸條件：

保存：-80℃保存，六個月有效。

運輸：干冰運輸。

注意事項

1） 感受態細胞必須用干冰運輸。感受態細胞應在-80℃保存，不可反復凍融且放置時間過長，否則會減低感受態細胞的轉化效率。

2） 最好在冰上融化感受態細胞，不可在冰上放置時間過長，長時間存放會降低轉化效率。

3） 進行轉化操作時，需在相應溫度及無菌條件下進行。

4） 為防止轉化實驗不成功，可保留部分連接反應液以重新轉化，將損失降到最低。

5） 產品包裝內含質粒pUC19 DNA(10pg/μl)，供對照實驗用。

6） 轉化高濃度的質?？上鄳獪p少最終用于涂板的菌量。

7） 誘導時，IPTG濃度范圍可選：0.1~2mM。

8） 為了得到足量的蛋白，需就最佳誘導時間、溫度、IPTG濃度進行優化。

9） 為了您的安全和健康，請穿實驗服并戴一次性手套操作。

使用方法【所有操作均在無菌條件的標準下進行】

1） 從-80℃冰箱取出取感受態細胞，迅速置于冰浴中，5min后待菌塊融化，加入目的DNA（質?；蜻B接產物），用手輕彈管底輕輕混勻（避免用槍吸打），冰浴靜置25min。

2） 42℃水浴熱激45s，迅速將離心管轉移到冰浴中，冰上靜置2min。此過程不要搖動離心管。

3） 向每個離心管中加700 μl無菌的2YT或LB培養基（不含抗生素），混勻后置于37℃ 搖床，200 rpm振蕩培養60min，目的使質粒上相關的抗性標記基因表達，使菌體復蘇。

4） 低速離心收菌（比如5000rpm，1min），留取100μl左右上清，用槍輕輕吹打重懸菌塊，之后加到篩選抗生素的2YT或LB固體瓊脂培養基上，用無菌的涂布棒將細胞均勻涂開，將平板置于室溫（或37℃）直至液體被吸收，倒置培養，37℃培養過夜。

【注意】：

a）涂布用量可根據具體實驗調整。若轉化的DNA總量較多，可不用離心，直接取少量轉化產物涂布平板；反之，若轉化的DNA總量較少，則通過離心（5000 rpm，1min）后吸除部分培養液，懸浮菌體后將其涂布于一個平板中。

b）新制備的固體培養基不易涂干，可將平板正置于37℃直至液體被吸收后再倒置培養。

c）涂布剩余的菌液可置于4℃保存，如果次日的轉化菌落數過少，可以將剩下的菌液再涂布新培養基進行培養。

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附錄I 蛋白誘導步驟（僅作參考）

1）從新鮮涂布平板上挑取一單克隆，轉移到含相應抗生素的5ml LB液體培養基內。

2）37℃搖菌培養過液。為了最小化誘導前目的蛋白的最小化表達，添加葡萄糖（終濃度為0.2% w/v）到生長培養基內。

3）將步驟2）中過夜培養的菌液吸取0.5ml接種到含相應抗生素的50ml LB液體培養基內。

4）37℃搖菌培養直至OD600達到0.6~0.8。

5）加入IPTG使其終濃度為1mM。目的蛋白的最佳誘導時間可能在2~16h，依蛋白而異。

6）37℃培養3~4h。為了確定目的蛋白的最佳誘導時間，建議作一個時間周期優化實驗，范圍從2~16h。

7）將培養物冰浴10min。4℃，5,000 x g離心10min收集菌株。

8）吸掉上清，將沉淀保存在-20℃（也能保存在更低的溫度）。

IPTG母液（1M）配制

稱量2.38g IPTG（Mw: 238.30）溶于適量去離子水，充分溶解后，調整終體積到10ml，并過濾除菌，即得到1M ITPG母液。

— —Written/Edited by V. Shallan【版權歸MKBio懋康所有】

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